Виявлення та ідентифікація штамів вірусів жовтої карликовості в посівах м’якої пшениці на півдні України та в Угорщині

  • О. В. Галаєв Селекційно-генетичний інститут – Національний центр насіннєзнавства та сортовивчення, Україна, 65036, м. Одеса, вул. Овідіопольська дорога, 3 https://orcid.org/0000-0001-7247-2910
  • М. В. Галаєва Селекційно-генетичний інститут – Національний центр насіннєзнавства та сортовивчення, Україна, 65036, м. Одеса, вул. Овідіопольська дорога, 3 https://orcid.org/0000-0001-8133-5184
DOI: https://doi.org/10.7124/FEEO.v36.1711
Ключові слова: пшениця м’яка (Triticum aestivum L.), вірус жовтої карликовості ячменю (BYDV), полімеразна ланцюгова реакція зі зворотною транскрипцією (RT-PCR), молекулярно-генетичні маркери

Анотація

Мета. Виявлення вірусів жовтої карликовості у посівах м’якої пшениці на Півдні України та в Угорщині, а також ідентифікація штамів BYDV із використанням молекулярно-генетичних методів. Методи. Метод візуальної діагностики. Полімеразна ланцюгова реакція зі зворотною транскрипцією (RT-PCR). Електрофорез у поліакриламідному гелі. Результати. Проведено обстеження посівів м’якої пшениці на Півдні України та в Угорщині на наявність вірусів жовтої карликовості ячменю (BYDV), жовтої карликовості злаків (CYDV) та жовтої карликовості кукурудзи (MYDV). При дослідженні посівів пшениці з використанням молекулярно-генетичних методів віруси CYDV та MYDV не були виявлені. Вірус BYDV був виявлений як на Півдні України та і в Угорщині. На Україні (м. Одеса) виявлено два штами вірусу жовтої карликовості ячменю BYDV-PAS та BYDV-PAV. У посівах на Угорщині циркулював лише один штам цього вірусу BYDV-PAS. Висновки. Використання молекулярно-генетичних методів для ідентифікації вірусів BYDV, CYDV, MYDV та їх окремих типів (штамів) дозволить формувати ефективніші системи моніторингу фітозахворювань, прогнозувати спалахи інфекцій та запобігати епіфітотіям.

Посилання

Choudhury S., Al-Shammar D., Hu H., Meinke H., Westmore G., Birchall C., Larkin P. and Zhou M. A screening method to detect BYDV-PAV resistance in cereals under glasshouse conditions. Plant Pathol. 2018. Vol. 67. P. 1987–1996. https://doi.org/10.1111/ppa.12888.

Mc Namara L., Gauthier K., Walsh L., Thébaud G., Gaffney M., Jacquot E. Management of yellow dwarf disease in Europe in a post-neonicotinoid agriculture. Pest Management Science. 2020. Vol. 76. P. 2276–2285. https://doi.org/10.1002/ps.5835.

Miller W. A., Lozier Z. Yellow dwarf viruses of cereals: taxonomy and molecular mechanisms. Annual Review of Phytopathology. 2022. Vol. 60. P. 121–141. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-121421-125135.

Dewar A. M., Ferguson A., Pell J. K., Nicholls C., Watts J. A Review of Pest Management in Cereals and Oilseed Rape in the UK | AHDB. AHDB Cereals & Oilseeds. 2016. Retrieved from: https://ahdb.org.uk/a-review-of-pest-management-in-cereals-and-oilseed-rape-in-the-uk.

Choudhury S., Larkin P., Meinke H., Hasanuzzaman M.D., Johnson P., Zhou M. Barley yellow dwarf virus infection affects physiology, morphology, grain yield and flour pasting properties of wheat. Crop and Pasture Science. 2019. Vol. 70. P. 16–25. https://doi.org/10.1071/CP18364.

Malmstrom C. M., Shu R. Multiplexed RT-PCR for streamlined detection and separation of barley and cereal yellow dwarf viruses. Journal of Virological Methods. 2004. Vol. 120. P. 69–78. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2004.04.005.

Deb M., Anderson J. M. Development of a multiplexed PCR detection method for Barley and Cereal yellow dwarf viruses, Wheat spindle streak virus, Wheat streak mosaic virus and Soil-borne wheat mosaic virus. Journal of Virological Methods. 2008. Vol. 148. P. 17–24. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2007.10.015.

Adams M. I., Lefkowits E. I., King A. M. Q., Carstens E. B. Ratification vote on taxonomic proposals to the International Committee on Taxonomy of viruses. Arch Virol. 2014. Vol. 159. P. 2831−2841. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2114-3.